Email this article 
65 years of in vitro culture in Poland
Abstract
Keywords
Full Text:
PDFReferences
Becker W. Zarys badań nad hodowlą tkanki roślinnej in vitro. Kosmos. 1934;25:44–56.
Czosnowski J. Charakterystyka fizjologiczna trzech typów tkanek Vitis vinifera: normalnej, tumora bakteryjnego (crown-gall) i tumora chemicznego, hodowanych in vitro. Pr Kom Biol Pozn Tow Przyj Nauk. 1952;13:189–208.
Czosnowski J. Metabolism of excised embryos of Lupinus luteus L. I. Effect of metabolic inhibitors and growth substances on the water uptake. Acta Soc Bot Pol. 1962;31(1):153–152.
Czosnowski J. Metabolism of excised embryos of Lupinus luteus L. II. The water uptake as influence by external concentration. Acta Soc Bot Pol. 1962;31(1):683–691.
Czosnowski J. Metabolism of excised embryos of Lupinus luteus L. III. Comparative study of cultured embryos and normal seedling axes. Acta Soc Bot Pol. 1962;31(1):693–702.
Rogozińska J. Analiza wpływu substancji rakotwórczych na strukturę i biochemizm tkanek roślinnych hodowanych in vitro [PhD thesis]. Poznań: Adam Mickiewicz University; 1958.
Rogozińska JH, Helgeson JP, Skoog F. Tests for kinetin-like growth promoting activities of triacanthine and its isomer, 6-(γ,γ-dimethylallylamino)-purine. Physiol Plant. 1964;17(1):165–176. http://dx.doi.org/10.1111/j.1399-3054.1964.tb09029.x
Rogozińska JH, Bryan PA, Whaley WG. Development changes in the distribution of carbohydrates in the maize root apex. Phytochemistry. 1965;4(6):919–924. http://dx.doi.org/10.1016/S0031-9422(00)86269-X
Rogozińska JH, Gośka M, Kużdowicz A. Induction of plants from anthers of Beta vulgaris cultures in vitro. Acta Soc Bot Pol. 1977;46:471–479.
Rogozińska JH, Drozdowska L. Występowanie glukozynolanów u rzepaku w kulturach in vitro. Biul IHAR. 1981;145:125–127.
Allsopp A, Szweykowska A. Foliar abnormalities, including repeated branching and root formation, induced by kinetin in attached leaves of Marsilea. Nature. 1960;186(4727):813–814. http://dx.doi.org/10.1038/186813b0
Szweykowska A. The effects of kinetin and IAA on shoot development in Funaria hygrometrica and Ceratodon purpureus. Acta Soc Bot Pol. 1962;31(3):553–557.
Leonard NJ, Achmatowicz S, Loeppky RN, Carraway KL, Grimm WA, Szweykowska A, et al. Development of cytokinin activity by rearrangement of 1-substituted adenines to 6-substituted aminopurines: inactivation by N6, 1-cyclization. Proc Natl Acad Sci USA. 1966;56(2):709–716.
Szweykowska A, Ratajczak W, Schneider J. Studies on the activity of kinetin in cultures of Funaria hygrometrica. I. Bud-inducing activity of kinetin and protein synthesis. Acta Soc Bot Pol. 1968;37(1):145–155.
Szweykowska A. Regulation of organogenesis in cell and tissue cultures by phytohormones. In: Schütte HR, Gross D, editors. Regulation of developmental processes in plants: Proceedings of the International Conference, Halle, July 1977. Jena: Gusttav Fischer; 1978. p. 219–235.
Szweykowska A. Hormonal control of protein synthesis in plants. In: Purohit SS, editor. Hormonal regulation of plant growth and development. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers; 1985. p. 2–36. (vol 2).
Rogozińska JH, Maciejewska T, Prusińska U, Szweykowska A. The activity of deaza- and aza-purine analogues of cytokinins in gametophores induction in protonema cultures of Funaria hygrometrica. Acta Soc Bot Pol. 1976;65(3):335–340.
Woźny A, Szweykowska A. Effect of cytokinins and antibiotics on chloroplast development in cotyledons of Cucumis sativus. Biochem Physiol Pflanz. 1975;168:195–209.
Zenkteler M, Hildebrandt AC, Cooper DC. Growth in vitro of mature and immature carrot embryos. Phyton. 1961;17:125–128.
Zenkteler M. Test tube fertilization in Dianthus caryophyllus Linn. Naturwissenschaft. 1965;54:645–646. http://dx.doi.org/10.1007/BF00637702
Zenkteler M. Test tube fertilization of ovules in Melandrium album Mill. with pollen grains of several species of the Caryophyllaceae family. Experientia. 1967;23:775. http://dx.doi.org/10.1007/BF02154172
Zenkteler M. Sztuczne zapładnianie zalążków i otrzymywanie mieszańców w hodowli in vitro w rodzinie Caryophyllaceae. Pr Kom Biol PTPN. 1969;33:59–132.
Zenkteler M. Test tube fertilization of ovules in Melandrium album Mill. with pollen grains of Datura stramonium L. Experientia. 1970;26:661. http://dx.doi.org/10.1007/BF01898751
Zenkteler M. In vitro production of haploid plants from pollen grains of Atropa belladonna L. Experientia. 1971;27:187. http://dx.doi.org/10.1007/BF02138897
Zenkteler M. Development of embryos and seedlings from pollen grains in Lycium halimifolium Mill. in vitro culture. Biol Plant. 1972;14:420–422. http://dx.doi.org/10.1007/BF02932983
Zenkteler M, Stefaniak B. Induction of androgenesis in anthers of Hordeum vulgare cultured in vitro on leaves and calluses. Plant Sci Lett. 1982;26:219–225. http://dx.doi.org/10.1016/0304-4211(82)90094-3
Zaklukiewicz K. Otrzymywanie ziemniaków wolnych od wirusów poprzez kultury tkanek. Biul Inst Ziemn. 1971;7:69–77.
Zaklukiewicz K, Sekrecka D. Mikrorozmnażanie jako metoda przygotowania wolnych od porażenia materiałów wyjściowych dla hodowli zachowawczej ziemniaka. Hod Rośl Nasien. 1994;4-5:21–28.
Turska E. Znaczenie mikrobulw w produkcji ziemniaka w Polsce. Ziemn Pol. 1995;4:21–25.
Zaklukiewicz K, Sekrecka D. Kolekcja in vitro (bank genów) odmian ziemniaka jako źródło zdrowych odmian ziemniaka. Ziemn Pol. 1994;4:4–11.
Strzelczyk-Zyta D, Kryszczuk A, Zimnoch-Guzowska E. Metody utrzymywania zasobów genowych ziemniaka w banku genów IHAR Oddział Młochów. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro, Międzyzdroje 8–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 153.
Oszkinis W, Lindner Z, Oszkinisowa K. Obtaining of virus free carnation plants (Dianthus caryophyllus L. v. semperflorens flore pleno). Biul IHAR. 1974;3–4:115–123.
Kowalska A. 33 Występowanie, identyfikacja i zwalczanie chorób wirusowych w Polsce [PhD thesis]. Warsaw: Warsaw University of Life Sciences – SGGW; 1970.
Kowalska A, Kochman J. Studies on the properties of Carnation mottle virus and Carnation ringspot virus isolated in Poland. J Phytopathol. 1972;74(4):329–341. http://dx.doi.org/10.1111/j.1439-0434.1972.tb02588.x
Zenkteler E. Uwalnianie roślin od wirusów metodą hodowli wierzchołków pędów. In: Zenkteler M, editor. Hodowla komórek i tkanek roślinnych. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 1984. p. 156–208.
Zenkteler E, Malepszy S. Kultura merystemów i uwalnianie roślin od wirusów. In: Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 33–42.
Kukułczanka K. Metoda kultur merystematycznych w produkcji roślin ozdobnych wolnych od chorób wirusowych. Przegl Inf Zieleń Miejska. 1968;1:32–41.
Kukułczanka K, Paluch B. Zastosowanie peptonu bacutil (peptobak) w hodowli merystematycznej tkanki Cymbidium Sw. Acta Agrobot. 1971;24(1):53–62.
Kukułczanka K, Prędota-Twarda B. Effect of morphactin on differentiation and development of Cymbidium Sw. protocorms cultured in vitro. Acta Soc Bot Pol. 1973;42(2):281–284.
Kukułczanka K, Kromer K. Restitutive regeneration of Phalaenopsis in vitro cultures. Acta Univ Vratisl. 1984;667(30):1–14.
Kukułczanka K, Kromer K, Klonowska B, Cząstka B. Wpływ temperatury na przechowywanie kultur Drosera in vitro. Pr OB PAN. 1991;1:63–68.
Hempel M, Gabryszewska E. Studies of in vitro multiplication of carnation. VI. The influence of some cytokinins on shoot proliferation. Pr Inst Sadownictwa Kwiaciarstwa w Ski. 1986;8:143–148.
Gabryszewska E, Hempel M. The influence of cytokinins and auxins on Alstroemeria in tissue culture. Acta Hortic. 1985;167:295–300.
Podwyszyńska M, Hempel M. The factors influencing acclimatization of Rosa hybrida plants multiplied in vitro to greenhouse conditions. Acta Hortic. 1988;226:693–642.
Gabryszewska E, Marasek A. Wpływ tidiazuronu na wzrost kalusa i regenerację pędów peonii (Paeonia hybrida) in vitro. Zesz Nauk AR W Krakowie. 1997;50:177–181.
Orlikowska T, Gabryszewska E. In vitro propagation of Acer rubrum cv. ‘Red Sunset’. J Fruit Ornament Plant Res. 1995;3(4):195–204.
Orlikowska T, Kucharska D, Nowak E, Rojek Z. Influence of silver nitrate on regeneration and transformation of roses. J Appl Genet. 1996;37A:123–125.
Orlikowska T. Influence of growth regulators and antibiotics on regeneration of Kalanchoe blossfeldiana Poeln in vitro. Biol Bull Poznań. 2001;38:29–34.
Borkowska B. Zmienność w kulturach in vitro. Wiad Bot. 1995;39(3–4):53–57.
Podwyszyńska M, Niedoba K, Korbin M, Marasek A. Somaclonal variation in micropropagated tulips determined by phenotype and DNA markers. Acta Hortic. 2006;714:211–219.
Malepszy S, Śmiech M. Selekcja i testowanie cech w kulturze in vitro. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 136–143.
Malepszy S, Niemirowicz-Szczytt K, Przybecki Z. Biotechnologia w genetyce i hodowli roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 1999.
Skucińska B, Miszke W, Kruczkowska H. Studies on the use of interspecific hybrids in tobacco breeding. Obtaining of fertile hybrids by propagation in vitro. Acta Biol Crac Ser Biol. 1977;20:81–88.
Malepszy S. Uzyskiwanie roślin w kulturach kalusowych haploidów Nicotiana sylvestris Speg. et Comes in vitro. Acta Biol. 1977;3:9–17.
Zimny J, Oleszczuk S, Czaplicki AZ, Woś H, Kozdój J, Sowa S, et al. Application of androgenesis in basic research and breeding of cereals. Acta Biol Crac Ser Bot. 2009;51(1 suppl):1–29.
Ponitka A, Ślusarkiewicz-Jarzina A. Effect of genotype and media composition on embryo induction and plant regeneration from anther culture in triticale. J Appl Genet. 1997;38:253–258.
Oleszczuk S, Sowa S, Zimny J. Androgenic response to preculture stress in microspore cultures of barley. Protoplasma. 2006;228(1–3):95–100. http://dx.doi.org/10.1007/s00709-006-0179-x
Laib Y, Szarejko I, Polok K, Małuszyński M. Barley anther culture for doubled haploid mutant production. MBNL. 1996;42:13–15.
Czaplicki AZ, Pilch J, Zimny J. Androgenesis – a method for using biodiversity in wheat improvement. Biotechnologia. 2012;93(2):221.
Skrzypek E, Stawicka A, Czyczyło-Mysza I, Pilipowicz M, Marcińska I. Wpływ wybranych czynników na indukcję androgenezy u owsa (Avena sativa L.). Zesz Probl Post Nauk Roln. 2009;534:273–281.
Nałęczyńska A, Cegielska T. Dihaploid production in Brassica napus L. by in vitro androgenesis. Genet Pol. 1984;25(3):271–276.
Cegielska-Taras T, Szała L. Direct production of double haploid plants from microspore-derived embryos of winter oilseed rape (Brassica napus L.). Rośliny Oleiste. 1998;19:353–357.
Cegielska-Taras T, Tykarska T, Szała L, Kuraś L, Krzymański J. Direct plant development from microspore-derived embryos of winter oilseed rape Brassica napus L. ssp. oleifera (DC.) Metzger. Euphytica. 2002;124(3):341–347. http://dx.doi.org/10.1023/A:1015785717106
Bartkowiak-Broda I, Cegielska-Taras T. Progress and status of doubled haploids of winter oilseed rape (Brassic napus L.) production. Biotechnologia. 2006;4:107–115.
Górecka K, Krzyżanowska D, Górecki R. The influence of several factors on the efficiency of androgenesis in carrot. J Appl Genet. 2005;46(3):265–269.
Górecka K, Krzyżanowska D, Kiszczak W, Kowalska U, Górecki R. Carrot doubled haploids. In: Touraev A, Forster BP, Jain SM, editors. Advances in haploid production in higher plants. New York NY: Springer Science; 2009. p. 231–239. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4020-8854-4_20
Górecka K, Krzyżanowska D, Kiszczak W, Kowalska U. Plant regeneration from carrot (Daucus carota L.) anther culture derived embryos. Acta Physiol Plant. 2009;31(6):1139–1145. http://dx.doi.org/10.1007/s11738-009-0332-1
Gałązka J, Wroniewicz R, Niemirowicz-Szczytt K. Cucumber (Cucumis sativus L.) microspore isolation and in vitro culture conditions. Biotechnologia. 2012;93(2):225.
Adamus A, Samek L. Effect of selected factors on the androgenesis in microspore cultures of white cabbage (Brassica oleracea var. capitata). Biotechnologia. 2012;93(2):228.
Cichorz S, Litwiniec A, Gośka M. Evaluation of genetic diversity in doubled haploids and maternal lines of sugar beet (Beta vulgaris L.). Biotechnologia. 2012;93(2):231.
Gośka M. Haploidy i podwojone haploidy buraka cukrowego (Beta vulgaris L.) oraz możliwości ich wykorzystania w hodowli. Monogr Rozpr Nauk IHAR. 1997;2:1–81.
Michalik B, Adamus A, Nowak E. Gynogenesis in Polish onion cultivars. J Plant Physiol. 2000;156(2):211–216. http://dx.doi.org/10.1016/S0176-1617(00)80308-9
Michalik B, Adamus A, Nowak E. Induction of haploid plants in Polish onion cultivars. Acta Hortic. 1997;447:377–378.
Zenkteler M, editor. Hodowla komórek i tkanek roślinnych. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 1984.
Adamski J, Sulinowski S, Kurchańska G, Surma M. Zastosowanie metody bulbozowej w hodowli jęczmienia. II.Charakterystyka linii autoploidalnych otrzymanych u mieszańców Emir × Himalays. Hod Rośl. 1984;5–6:6–8.
Gzyl J, Gwóźdź EA. Selection in vitro and accumulation of phytochelatins in cadmium tolerant cell line of cucumber (Cucumis sativus). Plant Cell Tiss Organ Cult. 2005;80(1):59–67. http://dx.doi.org/10.1007/s11240-004-8808-6
Ratajczak L. Regulacja enzymatyczna pierwotnej biosyntezy aminokwasów w łubinie żółtym. Poznań: Wyd Nauk UAM; 1981.
Ratajczak W. Asparaginian – centralny aminokwas w metabolizmie azotowym roślin motylkowatych. Poznań: Wydawnictwo Naukowe UAM; 1984.
Ratajczak W, Gwóźdź EA, Ratajczak L. Effects of asparagine and methionine on storage protein synthesis in cultured lupin cotyledons. Acta Physiol Plant. 1988;10:143–149.
Morkunas I, Borek S, Formela M, Ratajczak L. Plant responses to sugar starvation. In: Chang CF, editor. Carbohydrates – comprehensive studies on glycobiology and glycotechnology. New York NY: InTech; 2012. p. 409–438. http://dx.doi.org/10.5772/51569
Niemirowicz-Szczytt K, Kubicki B. Cross fertilization between cultivated species of genera Cucumis L. and Cucurbita L. Genet Pol. 1979;20:117–125.
Zenkteler M. In vitro fertilization and wide hybridization in higher plants. CRC Crit Rev Plant Sci. 1990;9(3):267–279. http://dx.doi.org/10.1080/07352689009382290
Stefaniak B. The in vitro development of isolated rye proembryos. Acta Soc Bot Pol. 1987;56(1):37–42.
Góralski G, Przywara L. In vitro culture of early globular-stage embryos of Brassica napus L. Acta Biol Crac Ser Bot. 1998;40:53–60.
Jach M, Przywara L. Somatic embryogenesis and organogenesis induced on the immature zygotic embryos of sunflower (Helianthus annuus L.) – the role of genotype. Acta Biol Crac Ser Bot. 1999;41(1 suppl):41.
Rakoczy-Trojanowska M, Malepszy S. A method for increased plant regeneration from immature F1 and BC1 embryos of Cucurbita maxima Duch. × C. pepo L. hybrids. Plant Cell Tissue Organ Cult. 1989;18(2):191–194. http://dx.doi.org/10.1007/BF00047744
Stolarz A, Lörz H. Somatic embryogenesis, in vitro manipulation and plant regeneration from immature embryos of hexaploid Triticale (×Triticosecale Witt.). Z Pflanzenzüchtg. 1986;96:353–362.
Zimny J, Becker D, Brettschneider R, Lörz H. Fertile transgenic Triticale (×Triticosecale Witt.). Mol Breed. 1995;1(2):155–164. http://dx.doi.org/10.1007/BF01249700
Oleszczuk S, Sowa S, Zimny J. Direct embryogenesis and green plant regeneration from isolated microspores of hexaploid triticale (×Triticosecale Witt. cv. Bogo). Plant Cell Rep. 2004;22:885–893.
Wędzony M. Otrzymywanie i wykorzystanie linii podwojonych haploidów u zbóż. Biotechnologia. 2001;1(52):51–62.
Zwierzykowski Z, Zwierzykowska E, Ślusarkiewicz-Jarzina A, Ponitka A. Regeneration of anther-derived plants from pentaploid hybrids of Festuca arundinacea × Lolium multiflorum. Euphytica. 1999;105(3):191–195. http://dx.doi.org/10.1023/A:1003479915606
Sobiech K, Książczyk T, Ślusarkiewicz-Jarzina A, Ponitka A, Zwierzykowski W, Zwierzykowski Z. Obtaining and cytogenetic identification of tetraploid hybrids Lolium spp. × Festuca pratensis. Biotechnologia. 2012;93(2):234.
Zenkteler M, Wojciechowicz M, Bagniewska-Zadworna A, Jeżowski S. Preliminary results on studies of in vivo and in vitro sexual reproduction of Salix viminalis L. Dendrobiology. 2003;50:37–42.
Zenkteler M, Wojciechowicz M, Bagniewska-Zadworna A, Zenkteler E, Jeżowski S. Intergeneric crossability studies on obtaining hybrids between Salix viminalis and four Populus species: in vivo and in vitro pollination of pistils and the formation of embryos and plantlets. Trees. 2005;19(6):638–643. http://dx.doi.org/10.1007/s00468-005-0427-2
Zenkteler M, Wojciechowicz MK, Bagniewska-Zadworna A, Jeżowski S, Baisheva EZ. Preliminary results on obtaining hybrids between Salix viminalis and Populus sp. through the technique of in vitro pollination of catkins. In: Jeżowski S, Wojciechowicz MK, Zenkteler E, editors. Alternative plants for sustainable agriculture. Poznań: IPG, PAS; 2006. p. 63–83.
Bagniewska-Zadworna A, Wojciechowicz MK, Zenkteler M, Jeżowski S, Zenkteler E. Cytological analysis of hybrid embryos of intergeneric crosses between Salix viminalis and Populus species. Aust J Bot. 2010;58(1):42–48. http://dx.doi.org/10.1071/BT09188
Bagniewska-Zadworna A, Zenkteler M, Zenkteler E, Wojciechowicz MK, Barakat A, Carlson JE. A successful application of the embryo rescue technique as a model for studying crosses between Salix viminalis and Populus species. Aust J Bot. 2011;59(4):382–392. http://dx.doi.org/10.1071/BT10270
Płażek A, Dubert F. Optimization of medium for callus induction and plant regeneration of Miscanthus ×giganteus. Acta Biol Crac Ser Bot. 1999;41(1 suppl):56.
Głowacka K, Zenkteler M, Jeżowski S. Mikropropagacja Miscanthus ×giganteus Greef & Den (Poaceae) z niedojrzałych kwiatostanów. In: Materiały X ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin “Biotechnologia roślinna w biologii, farmacji i rolnictwie”. Bydgoszcz, 15–17.09.2003. Bydgoszcz: ATR Bydgoszcz; 2003. p. 38.
Głowacka K, Jeżowski S, Kaczmarek Z. In vitro induction of polyploidy by colchicine treatment of shoots and preliminary characterisation of induced polyploids in two Miscanthus species. Ind Crops Prod. 2010;32(2):88–96. http://dx.doi.org/10.1016/j.indcrop.2010.03.009
Przyborowski JA, Sulima P, Jóźwik M. Indukcja somatycznej embriogenezy z mezofilu liścia ślazowca pensylwańskiego (Sida hermaphrodita Rusby). In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 100.
Rybczyński JJ, Zduńczyk W. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration in the genus Secale. Theor Appl Genet. 1986;73(2):267–271. http://dx.doi.org/10.1007/BF00289284
Zimny J, Rybczyński JJ. Somatic embryogenesis of triticale. In: Horn W, Jensen CJ, Odenbach W, Schieder O, editors. Genetic manipulation in plant breeding. Berlin: Walter de Gruyter; 1986. p. 507–510.
Rybczyński JJ. Plant regeneration in highly embryogenic callus, cell suspension and protoplast cultures of Trifolium fragiferum L. (Leguminosae). Plant Cell Tissue Organ Cult. 1997;51:159–170. http://dx.doi.org/10.1023/A:1005930209494
Menke-Milczarek I, Zimny J. Histological study of wheat somatic embryogenesis. Acta Biol Crac Ser Bot. 1999;41(1 suppl):50.
Mikuła A, Rybczyński JJ. Somatic embryogenesis of Gentiana genus I. The effect of the preculture treatment and primary explant origin on somatic embryogenesis of Gentiana cruciata (L.), G. pannonica (Scop.), and G. tibetica (King). Acta Physiol Plant. 2001;23(1):15–25. http://dx.doi.org/10.1007/s11738-001-0017-x
Pilarska M, Konieczny R, Tuleja M, Kuta E. Efficient plant regeneration of Trifolium nigrescens via somatic embryogenesis. Acta Biol Crac Ser Bot. 1999;41(1 suppl):21.
Burza W, Malepszy S. In vitro culture of Cucumis sativus L. XVIII. Plants from protoplasts through direct somatic embryogenesis. Plant Cell Tissue Organ Cult. 1995;41(3):259–266. http://dx.doi.org/10.1007/BF00045090
Szczygieł K, Hazubska-Przybył T, Bojarczuk K. Somatyczna embriogeneza wybranych gatunków drzew iglastych. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 102.
Bach A, Pawłowska B. Effect of light qualities on cultured in vitro ornamental bulbous plants. In: Teixeira da Silva JA, editor. Floriculture, ornamental and plant biotechnology. Advances and topical issues. Hongkong: Global Science Books; 2006. p. 271–276. (vol 2).
Bach A, Pawłowska B, Pulczynska K. Utilization of soluble carbohydrates in shoot and bulb regeneration of Hyacinthus orientalis L. in vitro. Acta Hortic. 1992;2(325):487–492.
Bach A, Warchoł M, Savona M. Wpływ substancji wzrostowych na organogenezę i somatyczną embriogenezę u śnieżyczki Elwesa (Galanthus elwesii Hook). Zesz Probl Post Nauk Rol. 2002;488:565–570.
Ruduś I, Kępczyńska E, Kępczyński J. Regulation of Medicago sativa L. somatic embryogenesis by gibberellins. Plant Growth Regul. 2002;36(1):91–95. http://dx.doi.org/10.1023/A:1014751125297
Ruduś I, Kępczyński J, Kępczyńska E. The influence of the jasmonates and abscisic acid on callus growth and somatic embryogenesis in Medicago sativa L. tissue culture. Acta Physiol Plant. 2001;23(1):103–107. http://dx.doi.org/10.1007/s11738-001-0029-6
Ruduś I, Kępczyńska E, Kępczyński J. Comparative efficacy of abscisic acid and methyl jasmonate for indirect somatic embryogenesis in Medicago sativa L. Plant Growth Regul. 2006;48(1):1–11. http://dx.doi.org/10.1007/s10725-005-5136-8
Kępczyńska E, Ruduś I, Kępczyński J. Endogenous ethylene in indirect somatic embryogenesis of Medicago sativa L. Plant Growth Regul. 2009;59(1):63–73. http://dx.doi.org/10.1007/s10725-009-9388-6
Gaj MD. Factors influencing somatic embryogenesis induction and plant regeneration with particular reference to Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Plant Growth Regul. 2004;43(1):27–47. http://dx.doi.org/10.1023/B:GROW.0000038275.29262.fb
Gaj MD, Zhang S, Harada JJ, Lemaux PG. Leafy cotyledon genes are essential for induction of somatic embryogenesis of Arabidopsis. Planta. 2005;222(6):977–988. http://dx.doi.org/10.1007/s00425-005-0041-y
Gaj MD, Trojanowska A, Ujczak A, Mędrek M, Kozioł A, Garbaciak B. Hormone-response mutants of Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. impaired in somatic embryogenesis. Plant Growth Regul. 2006;49(2–3):183–197. http://dx.doi.org/10.1007/s10725-006-9104-8
Ledwoń A, Gaj MD. LEAFY COTYLEDON1, FUSCA3 expression and auxin treatment in relation to somatic embryogenesis induction in Arabidopsis. Plant Growth Regul. 2011;65(1):157–167. http://dx.doi.org/10.1007/s10725-011-9585-y
Bach A. Technologia sztucznych nasion. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 295–306.
Kikowska M, Thiem B. Alginate-encapsulated shoot tips and nodal segments in micropropagation of medicinal plants. A review. Herba Pol. 2011;57(4):45–57.
Mikuła A, Rybczyński JJ. Krioprezerwacja narzędziem długoterminowego przechowy wania komórek, tkanek i organów pochodzących z kultur in vitro. Biotechnologia. 2006;4(75):145–163.
Olszowska O, Pytlewska A, Skorupińska K, Szypuła W. Poliprenole w kulturze zawiesinowej Taxus. In: Materiały X ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin “Biotechnologia roślinna w biologii, farmacji i rolnictwie”. Bydgoszcz, 15–17.09.2003. Bydgoszcz: ATR Bydgoszcz; 2003. p. 101.
Thiem B, Wesołowska M, Skrzypczak L. Eryngium planum w kulturze in vitro. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 89.
Budzianowska A, Skrzypczak L, Krawczyk A, Budzianowski J. Glukozydy fenyloetanoidowe w kulturach in vitro Plantago lanceolata L. In: Materiały X ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin “Biotechnologia roślinna w biologii, farmacji i rolnictwie”. Bydgoszcz, 15–17.09.2003. Bydgoszcz: ATR Bydgoszcz; 2003. p. 95.
Grajek W. Biosynteza metabolitów wtórnych w kulturach in vitro. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 306–341.
Ekiert H. Accumulation of biologically active furanocoumarins within in vitro cultures of medicinal plants. In: Ramawat KG, editor. Biotechnology of medicinal plants: vitalizer and therapeutic. Enfield NH: Science Publishers; 2004. p. 267–296.
Wysokińska H, Chmiel A. Produkcja roślinnych metabolitów wtórnych w kulturach organów transformowanych. Biotechnologia. 2006;4(75):124–135.
Chmiel A. Przemysł biotechnologiczny leku roślinnego. Farm Pol. 2002;58(3):103–110.
Furmanowa M. Znaczenie biotechnologii roślinnej w wytwarzaniu cytostatyków. Biotechnologia. 1992;4(19):27–36.
Szypuła W, Pietrosiuk A, Olszowska O, Furmanowa M. Wroniec widlasty Huperzia selago w kulturze in vitro; badania biotechnologiczne i fitochemiczne. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 202.
Wysokińska H, Chmiel A. Biotransformacje substancji chemicznych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2004. p. 144–170.
Grajek W. Kultury roślinne w bioreaktorach. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 87–143.
Chmiel A, Wysokińska H. Biotechnologia korzeni włośnikowatych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 433–446.
Królicka A, Szpitter A, Maciąg M, Biskup E, Gilgenast E, Romanik G, et al. Antibacterial and antioxidant activity of the secondary metabolites from in vitro cultures of the Alice sundew (Drosera aliciae). Biotechnol Appl Biochem. 2009;53(3):175–184. http://dx.doi.org/10.1042/BA20080088
Chmiel A. Biotechnologia farmaceutyczna: dokonania wieku XX i oczekiwania wieku XXI. Biotechnologia. 2002;4(59):56–78.
Czech-Kozłowska M, Krzywański Z. Phenolic compounds and the polyphenoloxidase and peroxidase activity in callus tissue culture-pathogen combination of red raspberry and Didymella applanata (Niessl.) Sacc. J Phytopathol. 1984;109(2):176–182. http://dx.doi.org/10.1111/j.1439-0434.1984.tb00704.x
Kozłowska M, Krzywański Z. Effect of 2,4-D and benzyladenine on colonization of red raspberry callus tissue with Didymella applanata (Niessl) Sacc. and on accumulation of phenolics. Acta Physiol Plant. 1988;10:25–30.
Kostyn K, Czemplik M, Czuj T, Kulma A, Szopa J. Early flax response to Fusarium. Acta Biol Crac Ser Bot. 2009;51(2 suppl):31.
Boba A, Kulma A, Kostyn K, Szopa J. Changes in terpenoid level after Fusarium treatment in flax. Acta Biol Crac Ser Bot. 2009;51(1 suppl):33.
Rutkowska-Krause I, Mankowska G, Łukaszewicz M, Szopa J. Regeneration of flax (Linum usitatissimum L.) plants from anther culture and somatic tissue with increased resistance to Fusarium oxysporum. Plant Cell Rep. 2003;22(2):110–116. http://dx.doi.org/10.1007/s00299-003-0662-1
Weigt D, Nawracała J, Popowska D, Nijak K. Examination of ability to androgenesis of spring wheat genotypes resistant to Fusarium. Biotechnologia. 2012;93(2):226.
Czubacka A, Doroszewska T. Obtaining tobacco double haploids containing different sources of resistance to PVY. Acta Biol Crac Ser Bot. 1999;41(1 suppl):16.
Żebrowska JI. In vitro selection in resistance breeding of strawberry (Fragaria ×ananassa Duch.). Commun Agric Appl Biol Sci. 2010;75(4):699–704.
Żebrowska JI. Efficacy of resistance selection to Verticillium wilt in strawberry (Fragaria ×ananassa Duch.) tissue culture. Acta Agrobot. 2011;64(3):3–12. http://dx.doi.org/10.5586/aa.2011.024
Grzebelus E, Derlaga K, Wiśniowska M, Piwowarczyk B, Grzebelus D. Wpływ toksyn produkowanych przez Alternaria radicina na kultury protoplastów Daucus carota. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii roślin. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 54.
Grzybek J. Kultury mycelialne jako źródło aktywnych metabolitów. In: Materiały VII ogólnopolskiej konferencji “Kultury in vitro w Polsce. Stan aktualny i perspektywy”. Poznań-Błażejewko. 9–11.05.1994. Poznań: Sorus; 1994. p. 18
Orczyk W. Rośliny otrzymane w wyniku fuzji protoplastów. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 355–362.
Zenkteler E. Współczesne metody wykrywania i eliminowania drobnoustrojów podczas mikrorozmnażania. Biotechnologia. 1998;1(40):149–166.
Łojkowska E. Diagnostyka molekularna roślin. Wykrywanie obecności czynników chorobotwórczych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 462–519.
Zimnoch-Guzowska E, Flis B, Lebecka R, Marczewski W, Mietkiewska E, Syller J. Elements of biotechnology applied to potato breeding at IHAR Młochów. In: Hrazdina G, editor. Use of agriculturally important genes in biotechnology. Ohmsa: IOS Press; 2000. p. 32–36. (NATO Sci A, Life Sci; vol 319).
Pojnar E, Cocking EC. Formation of cell aggregates by regenerating isolated tomato fruit protoplasts. Nature. 1968;218(5138):289–289. http://dx.doi.org/10.1038/218289a0
Pojnar E, Willison JHM, Cocking EC. Cell-wall regeneration by isolated tomato-fruit protoplasts. Protoplasma. 1967;64(4):460–480. http://dx.doi.org/10.1007/BF01666544
Pindel A, Lech M, Surówka J. Description of regenerated from protoplasts Lycopersicon glandulosum, L. peruvianum and L. esculentum Stevens × Rodade hybrid. Acta Biol Crac Ser Bot. 1998;40:41–46.
Piwowarczyk B, Pindel A. Isolation and culture of gras-pea (Lathyrus sativus L.) protoplasts-studies on viability and cell wall reconstruction. In: Abstracts of the IV Central European Congress of Life Sciences Eurobiotech. Cracow, Poland 12–15 Oct, 2011. Cracow: BiT; 2011. p. 101.
Orczyk W. Otrzymywanie i znaczenie mieszańców somatycznych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2009. p. 101–121.
Orczyk W, Przetakiewicz J, Nadolska-Orczyk A. Somatic hybrids of Solanum tuberosum – application to genetics and breeding. Plant Cell Tissue Organ Cult. 2003;74(1):1–13. http://dx.doi.org/10.1023/A:1023396405655
Przetakiewicz J, Nadolska-Orczyk A, Orczyk W. Tetraploidalne mieszańce somatyczne ziemniaka (Solanum tuberosum L.) otrzymane z linii diploidalnych. In: Materiały XI ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 85.
Nadolska-Orczyk A. Mechanizm transformacji genetycznej komórki roślinnej za pomocą Agrobacterium tumefaciens. Biotechnologia. 4(55):100–107.
Orlikowska T, Malepszy S. Hodowla odmian transgenicznych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 446–455.
Przetakiewicz J, Orczyk W, Nadolska-Orczyk A. Transformacja genetyczna pszenicy i jeczmienia za pomocą Agrobacterium tumefaciens. In: Materiały XI Ogólnopolskiej konferencji kultur in vitro i biotechnologii. Międzyzdroje 6–9.09.2006. Szczecin: Print Group; 2006. p. 69.
Szopa J, Skała J. Rozpoznanie i identyfikacja roślin transgenicznych. In: Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001. p. 254–260.
Malepszy S, editor. Biotechnologia roślin. Warsaw: Polish Scientific Publishers PWN; 2001,2004,2009.
Stefaniak B. Komórki in vitro. In: Woźny A, Przybył K, editors. Komórki roślinne w warunkach stresu. Poznań: Wydawnictwo Naukukowe UAM; 2004. p. 1–167. (vol 2).
Legocki AB, editor. Transformowanie i regeneracja roślin. Poradnik laboratoryjny. Poznań: IBCH, PAS; 1999.
DOI: https://doi.org/10.5586/asbp.2013.022
|
|
|
